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氮含量的测定' Q, Q; ^# B- D4 E- B9 H) K
一、 测定意义
; u( b$ F" {2 \8 a5 K; J' g4 z8 y蛋白质是由炭,氢,氧,氮,有时还有硫等元素的一种结构很复杂的有机化合物,是构成橡胶粒子保护层的重要物质。蛋白质对橡胶的性能有较大的影响。一方面,它的分解产物可以促进橡胶的硫化,延缓橡胶的老化,使橡胶制品耐用;另一方面,它又具有较强的吸水性,能增加生胶的和橡胶制品的吸水性和传电行,容易使生胶和橡胶制品发霉和不利于制作绝缘性的电工器材。因此测定标准橡胶的氮含量对了解标准橡胶和橡胶制品的性能,确定标准橡胶的使用范围均具有重要意义。
0 P9 C( A. L7 Z6 A二、测定原理
4 ^ o8 Y+ v8 o% X& x# [ 蛋白质是由多种氨基酸组成的物质,其氮含量平均为16%。据此,可将测定原理分述如下:; f7 m8 M' B$ u8 X2 U
1、 消化过程的反应2 Z1 q( i' E5 @4 b& f
用浓硫酸和混合接触剂(硫酸钾+氧化汞)与橡胶样品一起加热消化。) A( X0 H# s) X8 M+ d$ t. E7 p
加浓硫酸使橡胶失水而碳化为黑色。' G4 o8 k" P$ B' A2 x0 F
(C5H8)n +浓H2SO4 --→nC+n H2O
9 x) J. A# a9 m( y浓硫酸在高温下又分解出氧化能力极强的原子态氧:
( ^. c9 y$ h: A! ]# O# ~3 ? 2 H2SO4 --→2SO2↑ + 2[O] 5 f k5 K: U) v
原子态氧使含氮有机物中的碳氧化成二氧化碳:nC+2[O] --→nCO2 ↑/ j3 y6 H. {( e+ _& J! ]7 j- \ ]6 ~
在浓硫酸的作用下,橡胶中的蛋白质被水解生成氨基酸(以最简单的乙氨酸为例):0 s7 r8 V l# L, |9 c
蛋白质+浓硫酸¬¬¬¬¬¬→NH2CH2COOH' e4 o! ~, Z. u" E- g: |
生成的氨基酸在与硫酸作用,反应中分解出来的氮转变为氨:) m2 s, L. \8 S7 R
NH2CH2COOH+3H2SO4- -→ NH3 +2CO2↑+3SO2↑+ 4H2O↑
7 V u; n. ^5 o* M% L" ]生成的氨随即与硫酸结合生成铵盐被固定下来:
& h) j4 w: G- y1 J& I9 b+ n2NH3+H2SO4 →(NH4)2SO4
! F' E/ q$ Y" y7 V硫酸铵的沸点为513℃,高于消化温度,所以在338℃左右消化时不被分解。0 o2 h O8 Y' W/ @% {
在消化过程中,使用混合接触剂的作用分述下:( z# k- Y% S$ i: L& o" c
硫酸钾(K2SO4)是硫酸的增沸剂,其作用主要是提高硫酸溶液的沸点,促进消化。纯硫酸的沸点为317℃,加入硫酸钾后,硫酸溶液的沸点是338℃.但硫酸钾的用量不能过多,否则会产生NH4HSO4继而分解出N2逸出,以致结果偏低。" r5 ?% S! a5 y* e6 i r; p
氮化汞主要起催化作用,提高消化效率,缩短消化时间,其反应可用下式表示:
) @" Y R; e4 i* W# b% w! x' ^ N HgO+ H2SO4 -→HgSO4+H2O! t9 F7 \9 \% j: R
2HgSO4-→Hg2SO4 + SO2+ 2[O]
1 v- c: r9 V; Y# \; S8 l' d4 S- }9 N: m. O( P
氮化汞除催化作用外,还能和氨反应,即:, }7 h, U" P2 n: R ?, p: H3 c2 x
HgO+ 2NH3 →Hg(NH2)2+H2O
( y: |3 T* |4 z7 y$ ~1 s) }- Q
6 G3 }1 q8 i K5 u. V+ }3 F& N 此外,在消化过程中,也有一些附带的反应,如蛋白质分解出来的硫,在硫酸的作用下生成二氧化硫,其反应式为:/ O# s4 \& L) T# p
S + 2H2SO4 →3SO2+H2O
x Y' f+ }. b( ]由硫酸分解出来的二氧化硫,具有还原能力,可将橡胶中含氮化合物中的氮还原成氨。
) B, m) g( h ^* n8 B4 I) Y0 C2 _( c2. 蒸馏过程的反应:& H9 Y. \8 U6 t
消化溶液中含有硫酸、硫酸铵和其他接触等物质,加入氢氧化钠和硫代硫酸钠的混合碱液后,氢氧化钠中和硫酸,并将不挥发的硫酸铵转化为挥发性的氨而被蒸馏出来,用下列反应式表示。" \! [' e5 r! Y6 z5 ?: Y% U
H2SO4 +过量 NaOH →Na2SO4 +H2O(溶液呈碱性)
) \# a4 F' y+ _ H, e8 j (NH4)2SO4 + 2NaOH →Na2SO4 +2NH3↑ +H2O% B# G* }# e) O1 _ z8 [- L$ ~
硫代硫酸钠的作用是沉淀汞,并放出氨。+ k) a1 n1 _ |8 V( M2 }
Hg(NH2)2 + Na2S2O3 +H2O 2NH3↑+ HgS↓ +Na2SO4
: G/ E% Y" R+ u3 H8 |- R
& E1 d* G( N. `2 h3 r; P% y; s其中硫化汞为黑色沉淀,因此在反应中有黑色沉淀生成,表示Na2S2O3足够,否则须补加Na2S2O3。
; b2 F0 k% I1 M. A5 ]- S
) r9 w5 {! V/ G/ @0 J3. 吸收过程的反应:0 `' J' }6 g6 K9 L! u" j
在蒸馏过程中,由于混合溶液的作用而分解出来的氨,立即被硼酸溶液吸收,其反应如下:9 `+ g/ ?8 u4 H
3NH3 + H3BO3 (NH4)3BO3
( J7 X) O) N" ]) `% ?8 b5 h6 i) v4. 滴定过程的反应:& `& t: O- d2 a& J
A2 q+ C! t: l
吸收过程生成的(NH4)3BO3用标准硫酸溶液滴定,其反应式为:
3 n: V/ U4 q( i5 c" o 2(NH4)3BO3 + 8 H2SO4 →2 H3BO3 + 3(NH4)2SO4
8 f5 }0 X3 g( u! k, k# Y/ k# H+ M根据上述原理,本法采用半微量定氮蒸馏器(或凯氏微量定氮蒸馏器)测定橡胶的总氮。; u2 b$ q/ l! m/ E/ g
三.仪器和试剂
( \- z4 W. S) ], O( ], M1 W仪器:分度值为0.1mg的天平,电炉,凯氏微量烧瓶(50ml),吸管,微量滴定管、半微量定氮蒸馏器。
/ s$ W$ t# L- Q% G/ x5 g试剂:所有试剂应是确认的分析纯试剂。试验用水应是蒸馏水(或是去离子水)。 ?* ~2 d/ x' v" b! C: W
1、 浓硫酸,密度1.84g/ml;9 v1 a/ t; Z4 M9 ~0 n2 D6 S9 n
2、 混合接触剂(消化剂):15份午睡硫酸钾和0.8份红色氧化汞混合,研磨均匀,贮于密闭棕色玻璃瓶内;
, @2 b: y$ `2 l* W. @) }3、 混合碱液:400g氢氧化钠和50g硫代硫酸钠溶于蒸馏水,再稀释至1L贮于内壁涂上石蜡的玻璃瓶内(或用塑料瓶盛装)。) P/ E U! o U6 }' Y1 `( |& Q
4、 2%硼酸溶液
|1 x; P4 Q& D& M; k _ e5、 0.01mol/L的1/2H2SO4 标准溶液
" f& p" @+ k9 f p0 e6、 混合指示剂:0.1%溴甲酚绿的午睡乙醇溶液5份与0.1%甲基红的无水乙醇1份混合而成。2 t1 Q1 f+ Z# f* \3 G3 B
7、 混合接触剂:30份无水硫酸钾,4份五水硫酸铜,1份硒粉,研磨细密均匀而成。
+ c4 } f/ C( ~4 B8、 40%氢氧化钠溶液。
5 t- u' Y0 z( u* _+ i9、 1%硼酸溶液
& m3 A& a2 W2 d$ S7 O10、 混合指示剂:将0.1g甲基红个0.05g次甲基蓝溶于100ml的95%乙醇中(v/v).再存放过程中,指示剂不够稳定,要求新近配制。: Y/ |) F8 Y3 ^6 h0 m
四、测定方法* j( q7 z9 k) C( J9 Z. R
方法A:5 h4 l: h- E: E) ]4 E) j7 k: D) w
1、 剪样, 称重—从每小块分析样品中均匀地剪取两分各重约0.08—0.1g的细粒状试样,贮于干燥器中24h,然后在分度值为0.1mg天平上称量。% K" P2 _; s! m+ x! A
2、 消化—试样放入50ml凯氏烧瓶(消化瓶),再加1.58g混合接触剂2,浓硫酸3ml,然后置于电炉上加热约5分钟,待有白色的二氧化硫蒸汽出现,再提高温度充分加热,至消化液清亮无色,继续加热15分钟,关闭电源,让其冷却。
9 m: t* z1 _0 e8 x( S! M5 P3、 蒸馏—吸取20ml 2%硼酸溶液和4滴混合指示剂6放入锥瓶(吸收瓶)中,锥瓶置于蒸馏器冷凝管下端并使管口浸入液体中。消化液加10ml蒸馏水稀释。如尚有块状结晶,可微热使之溶解。稀释的消化液移入经蒸洗净的蒸馏器中,再加15ml混合碱液,并用少量蒸馏水冲洗消化瓶两次和蒸馏器小漏斗一次。& X6 n9 A/ S0 ~% F4 D' ^# B
通蒸汽进行蒸馏(整进圆底烧瓶中的水须先煮沸约30分钟,或加浓硫酸3ml进行酸化),保持每分钟溜出液为3—4ml蒸馏8分钟后,把冷凝管末端移离液面20—30ml。至锥瓶内溶液总量50ml时,用少量蒸馏水冲洗冷凝下端,取出锥瓶。1 n' _, S4 A9 T
4、 滴定—用硫酸标准液滴定锥瓶内吸收液,至溶液浅蓝色消失,紫红色出现即为终点,记录消耗硫酸标准溶液的毫升数。 I# I$ \. t- Y7 `$ S' _1 M7 o* y
5、 在相同的条件下做空白实验$ L4 {3 L+ V. M. w1 U4 l3 k
每次作两个试样,两平行实验结果,相对误差在1.0%以内,然后取平均值表示。) X& A3 J+ {/ f& E: ], E
. l/ K" ?( B0 k3 j
方法B" e4 j, o& e5 t0 N7 g
称取0.1g天然生胶,准确至0.1mg,再加入0.65g混合接触剂7和3ml浓硫酸于凯氏烧瓶中。置电炉上小心加热凯氏烧瓶内的内溶物至微沸。当内容物成为绿色而不带淡黄色后,继续加热30分钟,消化结束。1 V: z& Z. B6 X9 K
在开始第一次蒸馏前,凯氏蒸馏装置至少要通蒸汽30分钟,以冲洗蒸馏装置和三角瓶。
X. e8 |! U2 ]( l% o, W加10ml蒸馏水于凯氏烧瓶内溶解已消化的内容物,将内容物(消化液)用小漏斗转移到蒸馏瓶中,接着用蒸馏水洗涤凯氏烧瓶内壁3次洗涤液液转入蒸馏瓶中。在从漏斗口加15ml40%氢氧化钠溶液入蒸馏瓶中,并用少量蒸馏水洗漏斗。加10ml1%硼酸溶液,并滴入2滴混合指示剂10入烧瓶中,将锥瓶放在蒸馏装置的冷凝管下端,并使冷凝管下端浸入吸收液液面以下。通蒸汽入蒸馏瓶进行蒸馏蒸馏10—20分钟,收集溜液总体积70ml;放低锥瓶,使冷凝管下端恰好露出液面,再蒸馏1分钟,再用少量蒸馏水洗冷凝管下端,洗液液流入锥瓶,蒸馏结束。
4 |' N; P) t$ h! _五.计算:9 ^+ ~0 v$ U6 R6 R, U. C; Q
N含量(%)=[C ×( V-VO ) ×0.0140]÷m×100
: {3 J9 r4 l. @: T适中:C——硫酸标准溶液的摩尔浓度,mol/L的1/2 H2SO4
& v& {! G; c6 p x8 K4 t V——滴定试样所消耗硫酸标准溶液的体积,ml;* t5 f) B6 g0 D0 y3 F
VO 滴定空白试样所消耗硫酸标准溶液的体积,ml;' {. z: ^1 z, ^" m9 g
m— 试样的质量,g。9 ^( k0 N u# t9 U0 R' o! x9 S" C
如果要测定样品的蛋白质含量,只要测出氮含量,再乘上6.25即可得出蛋白质的含量了。
9 A: a! r% i4 I) Z5 K; P& r六、注意事项) }$ X- w" W) w( U% G: j
1、盛有水的烧瓶中应加入少许玻璃珠,以免水煮沸后气泡往上冲,如果水煮沸后有过热现象,则应加入少许干净的碎瓦片。
4 t+ c3 n1 J5 i6 T' ^+ N9 N2、消化瓶必须洗净,否则混合接触剂粘附管壁,致使消化时间延长。1 u- j- n, k# R! p5 [) s- Q L
3、消化时,消化应斜立于电炉上,开始温度不宜过高,以免消化液往上冲瓶壁如附有黑色颗粒应摇动消化液将其冲下。" m; X9 T; n( G7 T7 l
4、蒸馏时碱液必须过量,才能得到较好的结果。( b& O" @$ D" ^0 l4 I9 g1 s" W, w
5、蒸馏时注意调节冷却水及蒸汽量,使吸收液保持较低的温度,以免吸收不良,氨气损失致使结果偏低。1 F! {8 B! T, H) c/ N) ]" |
6、蒸馏时室内不能有碱性气体(氨气)存在。
, s' B4 X8 f" P* l! R' S# A) F( e7、如发现吸收液在蒸馏10分钟后仍为红色,并浑浊,且有硫磺气味产生时,则可能是消化时间不充分,此时再蒸馏已无效,必须重做。6 [) p. {9 c- h
8、各洗涤用水尽可能一致。
# ]4 Z* v6 D6 O, l9试验用蒸馏水(包括配制试剂)必须先煮沸除去二氧化碳。 |
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